Növényi CO2-analizáló rendszer
A Q-Box CO650 növényi CO2-analizáló csomag átfolyásos levélkamrába helyezett levelek fotoszintézisének, légzésének és transzspirációjának mérésére szolgál. A csomag laboratóriumban és terepen egyaránt használható (opcionális akkumulátorral). A Q-Box CO650 szoftver automatikusan ellenőrzi a CO2 és a vízgőz referenciaszintjét, és folyamatosan számítja a fotoszintézis és a transzspiráció sebességét.
Jellemzők
- Moduláris gázcsere-mérő rendszer
- Átfolyásos levélkamra
- Az alkatrészek más Q-Box csomagokkal felcserélhetők
- A szén- és vízcsere sebességének automatikus számítása
- Strapabíró kofferben a könnyű szállítás és telepítés érdekében
- Laboratóriumi és terepi használatra (opcionális akkumulátorral)
Alkalmazások
- A fotoszintetikus CO2-csere sebességének mérése
- A transzspiráció sebességének mérése
- Vízhasznosítási hatékonyság (WUE) vizsgálata
- A sötétlégzés sebességének mérése
- Levél-, gyökér- és teljesnövény-vizsgálatok (opcionális kamrákkal)
- Talajlégzés vagy állati légzés kiegészítő elemekkel
Fény és hőmérséklet
A LED-fényforrás (A113) minimális hőterhelés mellett biztosít fotoszintetikusan aktív sugárzást (PAR) a levél számára. Maximális teljesítményen kb. 2000 µmol foton/m2/s értéket ad, és kalibrálva (a szoftverben) kerül szállításra. Így a fényintenzitás fénymérő nélkül is pontosan beállítható. A levélkonduktancia számításához szükség van a levélhőmérséklet mérésére, amelyet a S173 levéltermisztor végez; ez az átfolyásos levélkamra alsó részében található (G112). Az összes érzékelő analóg jelét három integrált LabQuest Mini interfész (9 csatorna) alakítja digitális jellé. Az adatok megjelenítése, rögzítése és feldolgozása PC-n vagy Macintosh számítógépen, a Logger Pro szoftverrel történik. Minden csomaghoz testreszabott kísérleti fájlok tartoznak az adatgyűjtéshez, az automatikus számításokhoz és a további elemzéshez.
Fotoszintézis és légzés
A Q-Box CO650 növényi CO2-analizáló csomag egyetlen infravörös CO2-gázanalizátorral (Q-S151) működik. A levélkamrába belépő és onnan kilépő CO2 koncentrációját ugyanaz az analizátor méri különböző időpontokban. A DCU mágnesszelep-szerelvény felhasználó által beállított vezérlése vált a referencia- és a mintamérés között. Megvilágított levélnél a be- és kilépő CO2-szint különbsége (differenciális CO2), valamint a kamrán átmenő gázáramlás mérése lehetővé teszi a fotoszintetikus CO2-fixáció sebességének automatikus számítását. A sötétben végzett CO2-csere mérése a sötétlégzésről szolgáltat adatokat.
Transzspiráció
A Q-Box CO650 páratartalom-/hőmérséklet-érzékelőt (Q-S161) is tartalmaz, amely a levegő relatív páratartalmát méri a levélkamrán való áthaladás előtt és után. Ezzel egyidejűleg az RH-érzékelőnél a hőmérsékletet is méri. A belépő és kilépő gáz RH-különbségét, a hőmérsékletet, a levélkamrán átmenő áramlást és a levélhőmérsékletet használja a rendszer a levél transzspirációs sebességének automatikus számításához.
A Q-Box CO650 opcionális akkumulátorral terepen is használható
Q-Box CO650 szoftver
Nyers adatok egy zöldike (Chlorophytum) leveléről
A fotoszintézis és a transzspiráció automatikus számítása (a szoftver 2. oldala)
- Q-A101 Laboratóriumi állvány (szabadon álló és/vagy a Q-Boxba integrált)
- A113 A szoftverben kalibrált LED-fényforrás
- Q-G267 Áramlásfigyelő, gázpumpa 2× (1 l/perc terhelés nélkül)
- G112 Átfolyásos levélkamra
- G122 Nagy gázzsákok (2)
- Q-S151 CO2-analizátor (0–2000 ppm) (CO2- és H2O-elnyelővel)
- Q-S161 RH-/hőmérséklet-érzékelő
- S173 Levéltermisztor
- A383 DCU mágnesszelep a referencia- és a mintagáz közötti váltáshoz
- S181 Abszolútnyomás-érzékelő
- C610 Három integrált LabQuest Mini adatinterfész (9 analóg csatorna)
- C901 Logger Pro szoftver
- C404 Testreszabott kísérleti konfigurációs fájlok az adatok gyűjtéséhez, megjelenítéséhez és elemzéséhez
- Q-Box Accessory Kit Csövek, szűrők, csatlakozók
- Strapabíró, vízálló koffer az érzékelők és analizátorok számára
- Kézikönyv
- Külön tápegységek az érzékelők és analizátorok önálló használatához
Sengupta D et al. (2019) Photosynthetic performance and sugar variations during key reproductive stages of soybean under potassium iodide-simulated terminal drought. Photosynthetica 57: 458-469
Van de Poel B et al (2016) Transcriptome Profiling of the Green Alga Spirogyra pratensis (Charophyta) Suggests an Ancestral Role for Ethylene in Cell Wall Metabolism, Photosynthesis, and Abiotic Stress Responses. Plant Physiology 172 533-546
Eisingera W. et al. (2012) Microtubules Are Essential for Guard-Cell Function in Vicia and Arabidopsis. Molecular Plant 5: 601-610
